Diseñado para la purificación y concentración rápidas de productos de PCR o fragmentos de ADN que varían en tamaño de 50 pb a 10 kb. Este kit se puede utilizar para purificar ADN de volúmenes de reacción de hasta 100 Ál o rodajas de gel de agarosa de hasta 900 mg.
Ventajas
-Para el aislamiento y concentración de fragmentos de ADN de mezclas de PCR, bandas de gel de agarosa que contienen ADN, modificaciones de ADN basadas en enzimas y digestiones de enzimas de restricción.
-Método rápido y fácil de usar con menos de 10 minutos de tiempo del usuario.
-Volumen de elución flexible de 10 a 50 Ál para diferentes necesidades de concentración de ADN.
-Diseño de columna mejorado con mayor volumen máximo, con capacidad para hasta 800 Ál de volumen de líquido (950 Ál sin tapa).
-El ADN de alta pureza está listo para su uso directo en secuenciación, PCR, etiquetado, digestión con enzimas de restricción y clonación.
-La adición de un indicador de color visual al buffer de captura asegura un pH óptimo para una máxima unión y recuperación del ADN.
-Se proporcionan dos opciones de buffer de elución para adaptarse a aplicaciones posteriores.
-Código de colores para facilitar su uso.
El kit de purificación de bandas de gel y ADN para PCR illustra GFX está diseñado para la purificación y concentración rápidas de productos de PCR o fragmentos de ADN que varían en tamaño de 50 bp a 10 kb. Este kit se puede utilizar para purificar ADN de volúmenes de reacción de hasta 100 Ál o fragmentos de gel de agarosa de hasta 900 mg. El kit combina un buffer caotrópico versátil con una matriz de fibra de vidrio en una columna de centrifugación para la purificación de ADN tanto de la solución como del gel de agarosa. Las recuperaciones típicas oscilan entre el 60% y el 80% para los fragmentos de ADN de gel de agarosa hasta un 95% para los productos de PCR de la solución. La pureza del ADN es excepcional; Se eliminan el 99,5% de los contaminantes.
El kit de purificación de bandas de gel y ADN para PCR illustra GFX contiene los siguientes componentes en cantidades suficientes: columnas GFX, tubos de recolección, frascos codificados por colores de tampón de captura, tampón de lavado y dos tampones de elución (Tris-HCl y agua estéril), y una instrucción folleto.
Especificaciones técnicas
-Tamaño de la muestra 50 bp-10 kb
-Mezclas de PCR tipo muestra, reacciones enzimáticas, soluciones de ADN, rodajas de gel de agarosa
-Volumen de entrada 100 Ál de solución o hasta 900 mg de agarosa
-Volumen de elución 10-50 Ál (en uno de los dos tampones de elución proporcionados)
-Rendimiento PCR 10 Ál de volumen de elución-65%, PCR 50 Ál de volumen de elución-82%, 300 mg de agarosa 10 Ál de volumen de elución-57%, 300 mg de agarosa 50 Ál de volumen de elución-91%
Publicaciones con este producto
-Aguilar, O. M., López, M. V., Donato, M., Morón, B., Soria-Diaz, M. E., Mateos, C., ... & Megías, M. (2006). Phylogeny and nodulation signal molecule of rhizobial populations able to nodulate common beans-other than the predominant species Rhizobium etli-present in soils from the northwest of Argentina. Soil Biology and Biochemistry, 38(3), 573-586.
-Rossetti, L. C., Radic, C. P., Larripa, I. B., & De Brasi, C. D. (2008). Developing a new generation of tests for genotyping hemophilia-causative rearrangements involving int22h and int1h hotspots in the factor VIII gene. Journal of Thrombosis and Haemostasis, 6(5), 830-836.
-Radic, C. P., Rossetti, L. C., Abelleyro, M. M., Candela, M., Bianco, R. P., de Tezanos Pinto, M., ... & De Brasi, C. D. (2013). Assessment of the F9 genotype-specific FIX inhibitor risks and characterization of 10 novel severe F9 defects in the first molecular series of Argentine patients with haemophilia B. Thrombosis and haemostasis, 109(1), 24.
-Di Conza, J. A., Badaracco, A., Ayala, J., Rodriguez, C., Famiglietti, Á., & Gutkind, G. O. (2014). ß-lactamases produced by amoxicillin-clavulanate-resistant enterobacteria isolated in Buenos Aires, Argentina: a new blaTEM gene. Revista Argentina de microbiologia, 46(3), 210-217.
-Dal Zotto, A., Balzarini, M., Raigón, J. M., Rossini, M. N., & Ducasse, D. A. (2014). Plum Pox virus in japanese plum from Argentina: serological detection and molecular characterization of an isolate from cv. Red Beauty. Journal of Phytopathology, 162(1), 55-60.
-Woods, A. I., Sanchez-Luceros, A., Kempfer, A. C., Powazniak, Y., Calderazzo Pereyra, J. C., Blanco, A. N., ... & Lazzari, M. A. (2012). C1272F: a novel type 2A von Willebrand's disease mutation in A1 domain; its clinical significance. Haemophilia, 18(1), 112-116.
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